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    【CEM】Fmoc-His(Boc)-OH在基于Fmoc的固相肽合成中的應用

     更新時(shí)間:2024-08-06 點(diǎn)擊量:238

    一、組氨酸的差向異構化

    對映體純度極大地影響肽的生物活性;因此,避免D-異構體含量的增加至關(guān)重要。1在固相肽合成(SPPS)的偶聯(lián)過(guò)程激活階段,組氨酸特別容易發(fā)生差向異構化。組氨酸傾向于差向異構化(圖1)是一種分子內的副反應,這是由于咪唑Nπ上的孤對電子與酸性α碳氫的接近性所導致。當氨基酸被激活時(shí),1號位的孤對電子具有足夠的堿性以進(jìn)行去質(zhì)子化,從而形成一個(gè)無(wú)立體選擇性的酯烯醇鹽22。


    此時(shí),轉化為L-D-異構體3并沒(méi)有熱力學(xué)上的優(yōu)先途徑。當反應位點(diǎn)聚集,且組氨酸在激活狀態(tài)保持較長(cháng)時(shí)間的期間,差向異構化的可能性增加。

    【CEM】Fmoc-His(Boc)-OH在基于Fmoc的固相肽合成中的應用





    1Fmoc-His(PG)-OH在激活過(guò)程中高差向異構化水平的機制解釋


    二、組氨酸側鏈保護

    對咪唑環(huán)的保護(圖2)通常采用在Nτ位置使用三苯甲基(Trt)基團的方式實(shí)現4。Trt基團因其體積大和具有吸電子性,能夠有效抑制諸如環(huán)上N-?;雀狈磻?,然而在控制差向異構化方面效果有限。其他側鏈保護基團,尤其是那些提供Nπ保護的,例如Fmoc-His(π-Mbom)-OH5),通過(guò)阻斷α-氫的接觸途徑來(lái)減少差向異構化。但這些衍生物的缺點(diǎn)在于它們本身的高成本和因多步驟合成策略導致的低批量供應,這種策略需要在連接Mbom基團時(shí)對Nα位置進(jìn)行互斥保護。3,4,5,6此外,在肽切割過(guò)程中還需添加額外的清除劑,以防止新暴露的氨基功能團上發(fā)生羥甲基化。


    本文中,Fmoc-His(Boc)-OH6)被證實(shí)是Fmoc SPPS中組氨酸并入的寶貴替代物,因為它在高溫下對差向異構化具有較高的穩定性,成本低,且比其他任何市場(chǎng)上可購買(mǎi)的衍生物具有更好的批量供應能力。





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    圖2:Fmoc-SPPS用的組氨酸衍生物:Fmoc-His(Trt)-OH(4),Fmoc-His(π-Mbom)-OH(5)和Fmoc-His(Boc)-OH(6)



    三、Fmoc-His(Boc)-OH的優(yōu)勢

    Fmoc-His(Boc)-OH 能夠以游離酸和環(huán)己胺(CHA)鹽的形式大量購買(mǎi)。對于鹽形式,需要通過(guò)提取過(guò)程來(lái)移除CHA基團。鑒于這一過(guò)程相對繁瑣,我們的研究便專(zhuān)注于游離酸的應用。根據先前的報告,與His(Trt) 相比,His(Boc)在差向異構化方面的傾向性更低。7這一現象可以歸因于氨基甲酸酯基團較強的吸電子效應,它有效地從π子中抽取電子云密度,從而降低了其堿性。


    四、討論

    一項采用利拉魯肽和1-42Beta淀粉樣蛋白的可行性研究評估了-Boc基團在微波(MW)輔助固相肽合成(SPPS)過(guò)程中對差向異構化的抑制效果及側鏈的穩定性。肽段是在HE-SPPS條件下制備的,具體操作包括1分鐘90°C的去保護和2分鐘90°C使用DIC和Oxyma Pure進(jìn)行的偶聯(lián)。8與基于尿嘧啶的激活策略相比,DIC/Oxyma Pure激活在偶聯(lián)效率和抑制差向異構化方面提供了更優(yōu)的結果。后者的表現歸因于碳二亞胺活化所固有的酸性環(huán)境。9,10在室溫或稍高的條件(例如50°C)下并入組氨酸能進(jìn)一步降低D-異構體的形成,但這樣的條件對于His(Trt)仍然不夠理想。我們比較了His(Trt)和His(Boc)在使用兩種常見(jiàn)協(xié)議時(shí)的偶聯(lián)條件:(1)10分鐘50°C和(2)2分鐘90°C。最后,我們研究了溶液中的穩定性,以確定其在Liberty BlueTM HT12上的高通量自動(dòng)化應用的可行性。

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    利拉魯肽的合成

    利拉魯肽具有一個(gè)N端的組氨酸,這在與肽鏈的偶聯(lián)中存在一定難度,因此,通過(guò)微波加熱來(lái)增強?;饔檬怯幸娴?。使用三苯甲基保護在50°C下偶聯(lián)組氨酸10分鐘,結果顯示D-異構體的形成增加到了6.8%(如表1所示)。在相同條件下,Fmoc-His(Boc)-OH顯著(zhù)減少了差向異構化,僅為0.18%。


    Fmoc-His(Boc)-OH90°C時(shí)的表現也相當出色,觀(guān)察到的差向異構化水平為0.81%,相比之下His(Trt)則大于16%。Fmoc-His(Trt)-OHFmoc-His(Boc)-OH都以相當的粗純度獲得了目標肽(圖3)。Fmoc-His(π-Mbom)-OH在純度和D-His方面提供了與Fmoc-His(Boc)-OH相似的結果。

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    3:使用(a) Fmoc-His(Trt)-OH(b) Fmoc-His(Boc)-OH的利拉魯肽UPLC色譜圖。組氨酸偶聯(lián)條件 = 50°C,10分鐘??偤铣蓵r(shí)間 = 2小時(shí)55分鐘









    1:利拉魯肽中組氨酸在不同偶聯(lián)條件下的D-異構體形成情況

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    1-42Beta淀粉樣的合成

    之前的研究表明,在長(cháng)時(shí)間的哌啶處理過(guò)程中,Nτ-Boc側鏈基團顯示出不穩定性。11為了測試高溫去保護過(guò)程中–Boc的穩定性,我們合成了包含三個(gè)組氨酸殘基的1-42Beta淀粉樣蛋白。1-42Beta淀粉樣蛋白的合成序列是出了名的困難,需要使用特殊的偶聯(lián)試劑,即使在嚴苛條件下,產(chǎn)物純度通常也過(guò)低,無(wú)法進(jìn)行分析和純化。12與常規合成方法不同,HE-SPPS即便在未優(yōu)化的條件下也能獲得木及高的粗純度。我們比較了His(Trt)His(Boc)50°C下偶聯(lián)10分鐘以及90°C下偶聯(lián)2分鐘的情況。His(Boc)將總合成時(shí)間從4小時(shí)24分鐘縮短到3小時(shí)58分鐘,并且將差向異構化的比例從2.88%降低至1.29% D-異構體(表2)。UPLC分析表明,這兩種合成方法得到的目標產(chǎn)物在粗純度上具有可比性(圖4)。

    2BAHis(Trt)His(Boc)的差向異構化情況

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    4:使用(a) His(Trt)(b) His(Boc)1-42 Beta淀粉樣蛋白的UPLC色譜圖



    溶液中的穩定性


    在自動(dòng)化高通量SPPS應用中,要求底物能在溶液中保持溶解狀態(tài)長(cháng)達10天。通常,像組氨酸這樣的反應物由于保護基團的降解/丟失而導致變色和沉淀,其溶液壽命僅限于5天。在這項研究中,我們測試了組氨酸溶液(DMF,0.2 M)在大氣條件下存放10天的穩定性(圖5)。所有樣品都迅速溶解,得到無(wú)色溶液。Fmoc-His(Trt)-OH的變色在短短24小時(shí)內就開(kāi)始出現,并在10天的時(shí)間里加劇。10天后,Fmoc-His(π-Mbom)-OH溶液略呈黃色,而Fmoc-His(Boc)-OH溶液在研究期間保持無(wú)色。UPLC分析表明,Fmoc-His(Boc)-OHFmoc-His(π-Mbom)-OH保持了>99%的純度?;趶娏业淖兩?,預計在10天的研究期間Fmoc-His(Trt)-OH樣品中形成了幾種雜質(zhì)(圖6)。然而,使用質(zhì)譜對這些雜質(zhì)進(jìn)行定性未能成功。


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    5:不同組氨酸衍生物溶液中的穩定性顏色測試

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    6. 10天后DMF中組氨酸衍生物(0.2 M)UPLC分析;(a) = Fmoc-His(Trt)-OH (b) = Fmoc-His(π-Mbom)-OH (c) = Fmoc-His(Boc)-OH


    五、結論

    上述數據表明,His(Boc)是一種強大的組氨酸衍生物,可以在90°C下高效偶聯(lián),提供優(yōu)良的粗純度,同時(shí)縮短偶聯(lián)時(shí)間并顯著(zhù)降低差向異構化。與其他抑制差向異構化的N保護衍生物相比,Fmoc-His(Boc)-OH更易獲得,同時(shí)保持相當的合成性能。總之,Fmoc-His(Boc)-OH的核心優(yōu)勢包括:

    商業(yè)批量可用性強,價(jià)格相對于Fmoc-His(Trt)-OH更具競爭力

    在高溫下具有低水平的差向異構化;50°C及以下的偶聯(lián)溫度使得Fmoc-His(Boc)-OH適用于活性藥物成分的合成,無(wú)需復雜的偶聯(lián)試劑和條件13

    優(yōu)異的溶液穩定性;與Fmoc-His(π-Mbom)-OH相當,且優(yōu)于Fmoc-His(Trt)-OH


    六、材料與方法

    試劑

    以下Fmoc氨基酸和樹(shù)脂購自位于Matthews,NCCEM公司,包含所示的側鏈保護基團:Ala, Arg(Pbf), Asn(Trt), Asp(OMpe), Gln(Trt), Gly, His(Boc), His(Trt), Ile, Leu, Lys(Boc), Lys(palmitoyl-Glu-OtBu), Phe, Pro, Ser(tBu), Tyr(tBu), Val。Rink Amide ProTideTM LL, Cl-MPA ProTideTM LL, 以及Fmoc-Gly Wang PS LL樹(shù)脂也購自CEM公司。二異丙基碳二亞胺(DIC),哌啶,三氟乙酉夋(TFA),3,6-二氧雜-1,8-辛二硫醇(DODT)和三異丙基硅烷(TIS)購自Sigma-AldrichSt. Louis, MO)。二氯甲烷(DCM),N,N-二甲基甲酰胺(DMF),無(wú)水二乙酉迷(Et2O),乙酸,高效液相色譜級水,以及乙腈購自VWRWest Chester, PA)。液相色譜-質(zhì)譜級水(H2O)和液相色譜-質(zhì)譜級乙腈(MeCN)購自Fisher ScientificWaltham, MA)。D-異構體通過(guò)手性GC-MSC.A.T. GmbH)進(jìn)行測定。

    肽合成:利拉魯肽

    CEM Liberty Blue自動(dòng)化微波肽合成器上,以0.10 mmol的規模合成了該肽。使用了0.313Fmoc Gly Wang PS LL樹(shù)脂(0.32 meq/g置換)。去保護作用采用20%哌啶和0.1 M Oxyma PureDMF中執行。偶聯(lián)反應使用5倍過(guò)量的0.2 M Fmoc-AA、1.0 M DIC1.0 M Oxyma PureDMFCarboMAX)中進(jìn)行。切割則應用CEM Razor™高通量肽切割系統,配比為92.5:2.5:2.5 TFA/H2O/TIS/DODT。切割后,肽通過(guò)Et2O沉淀并過(guò)夜凍干。

    肽合成:1-42Beta淀粉樣蛋白

    采用CEM Liberty Blue自動(dòng)化微波肽合成器,以0.10 mmol的規模在0.512g Cl-MPA ProTide樹(shù)脂(0.19 meq/g置換)上合成了該肽。去保護作用使用20%哌啶和0.1 M Oxyma PureDMF中進(jìn)行。偶聯(lián)反應用5倍過(guò)量的0.2 M Fmoc-AA、1.0 M DIC1.0 M Oxyma PureDMFCarboMAX)中進(jìn)行。切割采用CEM Razor™高通量肽切割系統,配比為92.5:2.5:2.5 TFA/H2O/TIS/DODT。切割后,肽通過(guò)Et2O沉淀并過(guò)夜凍干。

    穩定性研究

    50毫升離心管中,制備了0.2摩爾濃度的組氨酸溶液(總共5毫升DMF),并對管進(jìn)行了密封。這些溶液在實(shí)驗室環(huán)境下保持在室溫,持續10天。為了準備用于超高效液相色譜-質(zhì)譜分析的樣品,將10微升的組氨酸溶液稀釋到5毫升的50/50(體積比)乙腈和水的混合溶劑中。調整進(jìn)樣量,直至吸光度達到35 – 55單位。

    七、參考文獻

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    (9) Patent: US20160176918

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    (11) Sieber, P.; Riniker, B. Tetrehedron Lett. 1987, 28, 6031 –6034.

    (12) Tickler, A. K; Clippingdale, A. B; Wade, J. D. Protein Peptide Lett. 2004, 11, 377 – 384.

    (13) Bacem Application Note. Mergler, M.; Dick, F.; Vorherr, Th. Methods for Fmoc-His(Trt)-OH Resulting in Minimal Racemization.

    (14) CEM Technical Note (P/N: 600837) - “Cl-MPA ProTide and Cl-TCP(Cl) ProTide Resin Loading and Protected Cleavage Procedures.


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